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油茶葉提取物的5α-還原酶抑制活性及化學成分分析(一)

發(fā)布時間:2021-05-09 20:12 編輯者:夏德婷

5α-還原酶(5α-Reductase,5α-R)是重要的雄性激素代謝酶,睪酮(Testosterone,T)在5α-還原酶(5α-R)的作用下不可逆地轉(zhuǎn)化雙氫睪酮(Dihydrotestosterone,DHT),過程中還要依賴還原性輔酶II(NADPH),如圖1所示。DHT是最強的活性雄性激素,因為它與雄性激素受體(Androgenreceptor,AR)的親和性比T高2~5倍,誘導AR信號傳導的效力比T高10倍可引發(fā)雄性激素依賴性疾病比如痤瘡、雄激素源性脫發(fā)、女性多毛癥、前列腺癌、前列腺增生、假兩性畸形等。

5α-R是皮膚中最重要的雄性激素代謝酶,它具有三種同工酶,其中I型和II型酶的特征比較清楚,二者的主要區(qū)別為5α-RI主要存在于肝臟及非生殖器官皮膚,其發(fā)揮生理作用的最適pH為范圍較寬為6~9,而5α-RII主要存在前列腺、睪丸、附睪、精囊、頭皮毛囊等,其最適pH為5.5。

目前已開發(fā)的5α-R抑制劑包括甾體類和非甾體類,最常見藥物如非那雄胺、度他雄胺、愛普列特等。但這些藥物存在不良反應(yīng),如代表性藥物非那雄胺可能對男性造成,抑郁、焦慮、認知障礙、勃起障礙、性欲減退、男性乳房女子化、肌肉生長受損等副作用,統(tǒng)稱為非那雄胺后綜合征(Post-finasteridesyndrome,PFS)。

這些副作用是這類藥物本身固有的,難以通過改造結(jié)構(gòu)來消除,因此從天然植物中尋找安全、有效且來源廣泛的5α-R抑制劑替代這些化學合成的抑制劑己成為國內(nèi)外研究的熱點。Niederprüm等通過體外實驗證實了鋸葉棕果實提取物具有5α-R抑制活性以及治療前列腺增生的效果。WeisserH等發(fā)現(xiàn)鋸葉棕提取物IDS89對人前列腺上皮和間質(zhì)中的5α-R具有抑制作用,且屬于非競爭性抑制,有效成分是可皂化亞組分中的月桂酸,它對上皮和基質(zhì)的最大抑制率分別為52%和45%。鄧桂球等從雌性大鼠肝臟、雄性大鼠附睪組織中分別提取I型、Ⅱ型5α-R,采用HPLC法測定出紅花提取物對I型、Ⅱ型5α-R活性均有抑制效果,抑制率分別達到88.12%和61.65%。另外也有研究報道大黃非洲臀果木、大蕁麻、薰衣草、蓮子心等植物的提取物具有良好的5α-R抑制活性,是天然來源的5α-R抑制劑。

油茶葉是山茶科植物油茶CamelliaOleifera的葉,《中華本草》中提到其味微苦,性平,有治療鼻衄,皮膚潰爛瘙癢,瘡疽的功效。羅曉偉等已經(jīng)證明油茶蒲具有5α-R抑制活性,油茶葉與油茶蒲同為油茶的重要組成部分,推測油茶葉與油茶蒲可能具有類似的生物活性。本文以5α-R為研究靶點,旨在探究油茶葉提取物對5α-R活性的影響,探討其成為潛在的5α-R抑制劑的可能性,并分析其化學成分,為其在治療雄性激素依賴型疾病如痤瘡、前列腺癌等提供理論依據(jù)。

1材料與方法

1.1材料與儀器

新鮮采摘的油茶葉,浙江省江山市江山之間生物科技有限公司提供;SPF級別雄性大鼠4只,體重(200±20)g,由浙江省醫(yī)學科學院提供,許可證編號SCXK(浙)2019-0002;還原型輔酶II,Bradford蛋白濃度測定試劑盒,上海碧云天;度他雄胺、睪酮、沒食子酸、蘆丁分析對照品,上海阿拉??;色譜級甲醇等有機試劑均來自國藥集團化學試劑有限公司。

高效液相色譜Waterse2695,美國Waters公司沃特世;LunaC18(2)色譜柱(4.6mm×250mm,5μm),美國Phenomenex公司;UltimateUHPLCLP-C18色譜柱(2.1mm×150mm,1.8μm),上海月旭;AcquityTMUltra型超高效液相色譜儀,美國Waters公司;SciexTripleTOF5600+四級桿飛行時間質(zhì)譜儀,美國ABSciex公司。

1.2實驗方法

1.2.1粗酶提取物的制備以及5α-R含量的測定

參考張蓓的方法并稍作修改,取雄性大鼠4只,禁食不禁水過夜后脫臼處死。迅速取肝臟,剝離脂肪組織,稱重,剪碎,置于燒杯,加入預冷的提酶緩沖液(提酶緩沖液:0.32mol/L蔗糖;0.1mmol/LDTT;1mmol/LEDTA;20mmol/L磷酸鹽緩沖液pH7.4)按照1:4(w/v)的比例在冰水浴中用勻漿器勻漿,制成勻漿液,然后將其分裝至離心管,在4℃、10,000×g條件下離心20min,除去漂浮的脂肪,取上層液體,同樣條件下再離心1h,上清液即為微粒體粗提取物。采用Bradford法對粗酶提取物定量,以其總蛋白質(zhì)含量表示5α-R的含量。

1.2.25α-R酶促反應(yīng)體系的建立與5α-R活性測定

1.2.2.1T標準曲線的制備

配制系列濃度T溶液:5μmol/L~2000μmol/L,將不同濃度T溶液用0.22μm微孔濾膜過濾至液相瓶,進入高效液相色譜儀檢測,以峰面積A(AU*min)為縱坐標,以T濃度C(μmol/L)為橫坐標,繪制標準曲線。

液相色譜條件:

色譜柱:LunaC18(2)柱(4.6mm×250mm,5μm)不銹鋼柱;柱溫:30℃;流動相:甲醇/水70/30(V/V);流速:1.0mL/min;檢測波長:242nm;進樣體積:20μL。

1.2.2.25α-R酶促反應(yīng)體系的建立

在1000μL測活體系中,將300μLPBS緩沖液(pH7.4)、500μL粗酶提取物稀釋液、50μLT、50μL50%乙醇、100μLNADPH按順序添依次加至離心管,于旋渦混合儀快速混合均勻3s,37℃恒溫水浴鍋反應(yīng)30min,在t0時刻與t30時刻快速分別取樣400μL,快速加入800μL甲醇(甲醇起到失活蛋白酶的作用),渦旋5s終止反應(yīng)。上述反應(yīng)液在12,000r/min離心15min,除蛋白,取上清液,0.22μm有機相濾膜過濾至液相瓶,待檢測。

1.2.2.35α-R活性測定

HPLC檢測比較反應(yīng)前t0時刻與反應(yīng)后t30時刻T峰面積的變化,液相色譜條件同1.2.2.1。將T峰面積帶入T標準曲線,計算出相應(yīng)濃度,以及T濃度的變化量,從而實現(xiàn)測定5α-R的活性。設(shè)置不同的反應(yīng)管包括:空白對照管(酶提取物用甲醇失活)、酶正常反應(yīng)管、陽性對照管(50%乙醇換成度他雄安溶液)。

計算公式如下:

△T(μmol/L)=Ct0–Ct30(1)

Ct0表示0min時T濃度,Ct30表示30min時T濃度,△T表示反應(yīng)前后T濃度的差值。

5α-R活性(μmolT/gprot·30min)=(Ct0–Ct30)/C5α-R(2)

定義5α-R活性(μmolT/gprot·30min)為每克酶提取物每30min轉(zhuǎn)化T的量,C5α-R(g/L)表示5α-R粗提取物的濃度,即5α-R粗提取物蛋白質(zhì)的濃度。

1.2.35α-R酶促反應(yīng)體系的優(yōu)化

1.2.3.1反應(yīng)體系中NADPH、T、粗酶提取物適宜添加濃度的確定

將NADPH用PBS配制成一系列梯度:0.5mmol/L、1mmol/L、1.5mmol/L、2mmol/L、2.5mmol/L,采用1.2.2中提到的5α-R活性測定方法,在固定5α-R提取物濃度為0.76mg/mL、T濃度為1mmol/L的條件下,以5α-R活性為指標,考察NADPH的適宜添加濃度。

將T配制成一系列梯度:0.025mmol/L、0.1mmol/L、0.4mmol/L、1.0mmol/L、1.5mmol/L、2.0mmol/L,采用1.2.2中提到的5α-R活性測定方法,在固定5α-R提取物濃度為0.76mg/mL,NADPH濃度為2mmol/L的條件下,以5α-R活性為指標,考察T的適宜添加濃度。

以蛋白質(zhì)濃度表示粗酶提取物的濃度,將其用PBS(pH7.4)緩沖液稀釋成系列梯度:0.38mg/mL、0.76mg/mL、1.52mg/mL、3.03mg/mL、6.06mg/mL,采用1.2.2中提到的5α-R活性測定方法,在固定T濃度為2mmol/L,NADPH濃度為2mmol/L的條件下,以5α-R活性為指標,考察粗酶提取物的適宜添加濃度。

1.2.3.2反應(yīng)體系穩(wěn)定性的考察

確定最終反應(yīng)體系各個組分的濃度條件:76mg/mL粗酶提取物500μL,2mmol/LT50μL,樣品50μL,2mmol/LNADPH100μL,分別測定四次空白對照管和酶正常反應(yīng)管的T濃度變化,考察反應(yīng)體系的重復性和穩(wěn)定性,計算相對偏差RSD。

1.2.3.3度他雄胺5α-R抑制活性的測定

度他雄胺是Ⅰ型5α-R抑制劑,將其為陽性藥物并稀釋成系列梯度:2nmol/L、4nmol/L、6nmol/L、8nmol/L、12nmol/L、16nmol/L,采用1.2.2中提到的5α-R活性測定方法,在適宜的NADPH濃度、T濃度、粗酶提取物濃度條件下,把50%乙醇溶液替換成系列濃度的度他雄胺溶液,考察不同濃度度他雄胺對5α-R活性的抑制率,繪制抑制曲線,計算出度他雄胺對5α-R活性的半抑制濃度(IC50),公式如下:

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